His 标记蛋白质微量纯化试剂盒
CAT#:JW-220542-20
常温运输,有 3 个低温成分
产品及特点
基于组氨酸-镍(His-Ni)亲和层析的蛋白质纯化方法是目前分离纯化重组表 达蛋白质的重要方法 ,本产品就是专门用于上述实验的一站式产品 ,具有下列特点:
1. 一站式套装 ,含所需的镍柱介质、 上柱液、洗柱溶液和层析柱 , 用户只需要提供表达 His 蛋白的细菌(酵母、杆状病毒、培养细胞) 即可 , 非常方便。
2. 一次过柱即可获得纯度高达 95%的 His-标记蛋白。
3. 可在变性和非变性条件使用。
4. 每次可以处理 20 mL 的表达菌液 ,适合初步筛选和鉴定。
5. 提供 4 mL 浓度为 50%的 Ni-Agarose 介质 ,其最大载量为 20-30 mg His标记蛋白质/mL 介质 。本介质可以反复使用。
6. 本产品只能科研使用。
规格及成分
本产品采用小扁盒盒包装
成份 编号 规格 包装材料
镍柱介质 , 50% 220542 4 mL 5 mL 本色瓶
1 M 咪唑溶液 220542a 25 mL 30 mL 本色瓶
1 M Tris-HCl 溶液 ,pH7.9 220542b 25 mL 30 mL 本色瓶
5 M NaCl 溶液 220542c 25 mL 30 mL 本色瓶
溶菌酶+核酸酶(3: 1: 1) 220542d 50 mg 1.5 mL 红盖管
盐酸胍干粉 50-01- 1 6 g 10 mL 本色瓶
尿素干粉 57- 13-6 20 g 30 mL 本色瓶
PMSF 溶液( 10mg/mL) 100833 0.5 mL 1.5 mL 白盖管
亲和层析柱 , 6 mL 110809 1 套 塑料袋
使用手册 220542sc 1 份 无
运输及保存
常温运输和保存 ,但镍柱介质长期需 4℃保存 ,溶菌酶+核酸酶和 PMSF 溶液需-20℃保存 ,有效期一年
自备试剂
去离子水、 20%乙醇、针头过滤器(0.45μm)
使用方法
1. 将镍柱介质充分混匀后 ,取适量加入到预放了一片筛板的层析柱中(镍柱介质用量需要根据 His 蛋白产量决定 ,其最大载量为 20-30 mg His 标记蛋白质/mL 介质 ,请根据实验需要取适量的镍柱介质加入层析柱)。
2. 用 5 倍柱体积(指镍柱介质的体积 ,下同) 自备去离子水洗柱 ,共三次。
3. 用 5 倍柱体积的新配结合液洗柱(配方如下 , 以 10 mL 为例),共三次:
成分 用量 在结合缓冲液中的浓度
1 M Tri-HCl(pH7.9) 0.2 mL 20 mM
1 M 咪唑溶液 0. 1 mL 10 mM
5 M NaCl 溶液 1 mL 500 mM
自备去离子水 8.7 mL -
4. 室温 5000 g 离心 10 分钟收集 20 mL 表达菌液,弃上清,沉淀(约 100 mg)放冰上待用或放-80℃保存 。最好用不加诱导物的菌液做对照样。
5. 如果超声破碎细菌 :加入 1 mL 冰浴的结合液(1 mL 菌液需要用 50 uL 结 合液),再加入 25 uL PMSF( 10 mg/mL) 溶液 ,冰上超声裂解菌体直到 在显微镜下看见绝大多数细胞破裂 。超声参数需根据仪器型号自行摸索 ,但 裂解物必须不粘稠 ,否则会堵塞层析柱 。如果酶法裂解细菌 :加入 1 mL 冰 浴的含溶菌酶的结合液(先取 20 mL 结合液 ,加入所有 50 mg 溶菌酶-核酸 酶干粉,溶解后分装成 1 mL/管,剩余的-20℃放置),再加入 25 uL PMSF( 10 mg/mL)溶液 ,冰上放置 30 分钟。
6. 4 ℃下 13000- 15000 g 离心 10 分钟 ,去除残留细胞和细胞碎片以防堵柱 , 收集上清 , 留样做 SDS-PAGE 电泳对照 。如果要纯化裂解液中可溶部分的 His 标记蛋白,则直接进入第 7 步;如果要纯化裂解液中包涵体(沉淀部分)中的 His 标记蛋白 ,则直接进入第 12 步。
A、纯化细胞裂解液中可溶部分的 His 标记蛋白
7. 将上步得到的上清液上柱 ,让重力使裂解液自然流出 。如要提高 His 标记蛋 白与介质的结合效率 ,可用试剂盒提供的红盖将层析柱下的漏液口堵上 ,让细菌裂解液和介质在 4℃结合 30 分钟或过夜。
8. 用 10 倍柱体积结合液洗柱(配方见上表),收集并保存穿透液(含杂质或没被吸附的 His 标记蛋白 ,可做 SDS-PAGE 电泳的对照)。
9. 如果用一步式洗脱法(适合已经找到最佳咪唑浓度的情况),则直接用适量的 新鲜配制的洗脱液洗柱,收集并保存穿透液(含 His 标记蛋白)。洗脱液的配方如下(以 1 mL 体积和最佳咪唑浓度是 500 mM 为例):
成分 用量 在洗脱液中的浓度
1 M Tri-HCl ( pH7.9) 20 uL 20 mM
1 M 咪唑溶液 500 uL 500 mM
5 M NaCl 溶液 100 uL 500 mM
自备去离子水 380 uL -
10. 如果用多步式洗脱(适合不知道最佳咪唑浓度或一步式洗脱杂质多的情况), 则按上表配制一系列咪唑浓度不同(如 40、60、100、200、300 和 500 mM), 其他成分浓度不变的洗液 ,按从低到高的顺序洗涤并收集样品 ,SDS-PAGE电泳检测 His 标记蛋白所在的区域。
11. 洗脱后,依次使用 10 倍柱体积的去离子水洗涤柱子,再用 3 倍柱体积的 20% 乙醇平衡(乙醇要将填料浸没),最后堵住层析柱下端的漏口 , 4 ℃保存待下次使用。
B、纯化包涵体中 His 标记蛋白
12. 将第 6 步离心得到的包涵体沉淀重悬于 1-3 mL 含盐酸胍结合液中或 1-3 mL 含尿素结合液中(建议优先使用尿素做变性剂 , 因为得到的洗脱液可以直接 跑 SDS-PAGE ,而用盐酸胍的洗脱液需先除盐后才能电泳)。冰浴 1 小时以 使包涵体溶解,期间可轻柔摇晃几次。含变性剂的结合液配方如下(以 10 mL为例):
成分 含盐酸胍结合液 含尿素结合液
1M Tri-HCl(pH 7.9) 200 uL 200 uL
5M NaCl 溶液 1 mL 1 mL
盐酸胍(MW=95.6) 5.7 g 无
尿素(MW=60. 1) 无 4.8 g
自备去离子水 加水到 10 mL 加水到 10 mL
13. 室温 10000×g 离心 20 分钟 , 沉淀为未溶解的包涵体 。将上清(含溶解后的 His 标记蛋白) 以自备的针头过滤器(0.45 μm)过滤。
14. 将滤过液上柱 , 后续纯化步骤同第 7-第 11 步 。只是所用结合液和洗脱液均含变性剂 ,含变性剂的洗脱液配方见下表(以 1 mL 为例):
成分 含盐酸胍洗脱液 含尿素洗脱液
1M Tri-HCl(pH7.9) 20 uL 20 uL
1M 咪唑溶液 500 uL 500 uL
5M NaCl 溶液 100 uL 100 uL
盐酸胍(MW=95.6) 0.57 g 无
尿素(MW=60. 1) 无 0.48 g
自备去离子水 补水到 1 mL 补水到 1 mL
注意事项
整个实验需避免含巯基乙醇、 DTT 和 EDTA 等成分 。若洗脱液不能将 His 标记蛋白洗脱下来 ,可改用 pH 6.5- 4.5 的 pH 递减的 Tris-HCl 洗脱。