CAT#:JW-230713-100
低温运输,-20℃保存
染料法实时可调易错PCR试剂盒
产品及特点
易错PCR(Error-Prone PCR)是利用Taq DNA多聚酶不具有3′→5′ 校对功能的特性,在一定条件下(如不同的dNTP浓度、Mg2+浓度和MnCl2存在)能够以较高的机率随机引入突变。如果有适当的选择方法,则可从构建的突变库中筛选出所需突变体。很多时候,用户需要通过易错PCR得到不同突变数的DNA片段。为满足此需求,本公司开发了可调易错PCR试剂盒。在实用过程中,发现易错PCR循环数很难优化,PCR循环数过多或过少都得不到清晰的DNA条带用于后续回收和克隆。本公司继续改进并推出染料法实时可调易错PCR试剂盒,它具有下列特点:
1.即开即用,十分简单方便。
2.在荧光信号进入平台期即可终止循环,此时电泳就可以得到清晰的突变DNA条带,不需要盲目摸索,节约大量的时间。
3.实验人员在一定范围内可以控制突变率,一轮PCR的突变率范围在2-8个突变/1000 bp,更高的突变率可以通过多轮PCR达到。
4.可用于连续易错PCR,只需把上一次易错PCR的产物用作下一次易错PCR的模板即可,使每一次获得的小突变累积而产生重要的有益突变。
5.可以扩增的DNA片段更长,达到2 kb,对于2 kb以上的产物,建议分段扩增。
6.本试剂盒足够100次30 mL体系的染料法实时易错PCR。
7.本产品只能用于科研。
规格及成分
本产品采用五孔盒包装
成份 编号 规格 包装
5×染料法实时可调易错PCR Mix(含dNTP) 230713a 600 mL 1.5 mL黄盖管
可调易错PCR专用Taq DNA聚合酶(5 U/mL) 211216b 50 mL 0.5 mL红盖管
可调易错PCR专用MnCl2 211216c 300 mL 0.5 mL紫盖管
可调易错PCR专用dGTP 211216d 300 mL 0.5 mL蓝盖管
10×可调易错PCR追加dNTP 211216e 300 mL 0.5 mL本色管
使用手册 230713sc 1份 1份
运输及保存
低温运输,-20℃保存, 有效期为一年。
自备试剂
引物、DNA模板、常规PCR试剂盒。
使用方法
1.将引物稀释到10 μM。引物也是决定易错PCR成败的关键因素,设计引物时要保证其Tm在70℃,长度在25-30 nt之间,GC含量在45%-60%之间,3′ 端GC含量低,并且没有发夹结构。
2.用自备易错PCR引物和自备的常规PCR试剂扩增制备易错DNA模板(常规PCR产物),胶回收并准确确定浓度。注意:易错PCR的模板一定要用胶回收的常规PCR产物,因为胶回收会可以把电泳不可见的非特异性扩增片段去除,否则这些片段由于也是用易错PCR引物扩增所得,在易错PCR扩增时也会被扩增,产生竞争抑制,降低靶分子的扩增效率。
3.将回收的DNA片段(模板)稀释到100 ng/mL、10 ng/mL和1 ng/mL三个浓度。注意:模板使用量是影响突变率的最重要因素,模板DNA为非突变DNA,扩增产生的DNA为突变DNA,易错PCR体系最终DNA产量是基本固定的,因此模板DNA使用量越大,则突变DNA在终产物中的相对比例就越低,突变率就越低。故建议同时测试三个模板用量。如果都成功,则优先选用模板浓度低的PCR产物进行分析。
4.根据每1000 bp的预期突变数按下表确定30 mL易错PCR体系中MnCl2和dGTP的用量(这是在模板DNA不超过1 ng的前提下的数据)。表中的Mn表示可调易错PCR专用的MnCl2, dG表示可调易错PCR专用的dGTP:
预期突变数 2个 3个 4个 5个 6个 7个 8个
Mn用量(mL) 0 1.0 2.5 4.0 4.0 4.0 4.0
dG用量(mL) 0 0 0 1.0 2.0 3.0 4.0
5.设置30 mL体系的可调易错PCR:第一次建议设置3个模板浓度。在3个干净的PCR管中,分别加入下列成分。最后加可调易错PCR专用MnCl2:
成分 模板用量1 模板用量2 模板用量3
5×染料法实时可调易错PCR Mix 6 mL 6 mL 6 mL
可调易错PCR专用dGTP 根据上步用量表表选择 根据上步用量表选择 根据上步用量表选择
自备DNA模板 1 mL(100 ng/mL) 1 mL(10 ng/mL) 1 mL(1 ng/mL)
自备PCR引物(10 mM each) 1 mL each mL each 1 mL each
可调易错PCR专用Taq DNA聚合酶 0.5 mL 0.5 mL 0.5 mL
可调易错PCR专用MnCl2 根据上步用量表表选择 根据上步用量表表选择 根据上步用量表表选择
自备超纯水 补水到30 mL 补水到30 mL 补水到30 mL
6.按已经优化的常规PCR条件进行染料法实时易错PCR:
PCR前变性 94℃ 3分钟
易错PCR
(60次循环,但操作时PCR应该在荧光信号进入平台期后结束,不一定要做满60个循环) 94℃ 1分钟
60℃ 1分钟
72℃ 3-10分钟。在此步采集SYBR通道的荧光
注:由于易错PCR含高浓度的Mg2+,因此容易形成引物二聚体,因此需要使用60℃这种较高的复性温度,以避免小片段扩增产物竞争性抑制PCR。易错PCR一般不需要热启动,也不需要在易错PCR结束后做延伸处理。易错PCR循环次数越多,突变DNA(扩增产物)与非突变DNA(原始模板)的比例就越高。此外在突变率和模板长度恒定的情况下,扩增次数越多,发生突变的绝对数就越高,在同一模板上发生的突变位点数就越多。但循环数过多或过少都不容易在电泳时形成清晰的DNA条带,没有条带就没法回收克隆。所以需要在荧光信号进入平台期后立即停止PCR。
7.染料法实时易错PCR结束后,取3 mL电泳检查。
8.如果有预期大小的PCR产物,则用剩余的PCR产物进行胶回收,再进行克隆和测序等后续操作。
9.如果需要提高突变率,可以选择上轮易错PCR产物为模板,再进行下一轮易错PCR。
10.如果第一轮易错PCR没有得到预期大小的PCR产物或者扩增60次也没有荧光信号,可以按下列操作进行一轮追加PCR。
11.在PCR管中,加入3 mL 10×可调易错PCR专用追加dNTP到27 mL电泳剩下的第一轮易错PCR体系中(用了3 mL去电泳),按下表进行追加PCR(chasing PCR)。注意追加PCR只做20次循环。
步骤 参数 循环数
追加PCR 94℃ 1分钟 循环20次,但实际操作时,只要荧光信号进入平台期即可在72℃结束时终止PCR。
60℃ 1分钟
72℃ 1分钟,在此步采集SYBR通道的荧光
12.追加PCR结束后,再电泳检测。如果有条带,再进行克隆和测序等后续操作。如果需要增加突变率,可以此轮追加PCR的产物为模板,再进行下一轮易错PCR。
13.如果没有预期大小的PCR产物,则需要分析原因。
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